منوی کاربری
  • پشتیبانی: ۴۲۲۷۳۷۸۱ - ۰۴۱
  • سبد خرید

ترجمه مقاله آماده سازی سلول های آگروباکتریوم جهت تسهیل پروتکل ترانسفورم آرابیدوپسیس

ترجمه مقاله آماده سازی سلول های آگروباکتریوم جهت تسهیل پروتکل ترانسفورم آرابیدوپسیس
قیمت خرید این محصول
۳۱,۰۰۰ تومان
دانلود رایگان نمونه دانلود مقاله انگلیسی
عنوان فارسی
روشی پیشرفته به منظور آماده سازی سلول های آگروباکتریوم جهت تسهیل پروتکل ترانسفورم آرابیدوپسیس
عنوان انگلیسی
An improved method for preparing Agrobacterium cells that simplifies the Arabidopsis transformation protocol
صفحات مقاله فارسی
9
صفحات مقاله انگلیسی
5
سال انتشار
2006
نشریه
plantmethods
فرمت مقاله انگلیسی
PDF
فرمت ترجمه مقاله
ورد تایپ شده
رفرنس
دارد
کد محصول
4861
وضعیت ترجمه عناوین تصاویر
ترجمه شده است
دانشگاه
موسسه تحقیقات اصلاح نباتات، دپارتمان تداخلات میکروب گیاهی، آلمان
رشته های مرتبط با این مقاله
مهندسی کشاورزی و بیوتکنولوژی
گرایش های مرتبط با این مقاله
زراعت و اصلاح نباتات، علوم و تکنولوژی بذر، ژنتیک مولکولی و مهندسی ژنتیک، اکولوژی گیاهان زراعتی و بیوتکنولوژی کشاورزی
مجله
BioMed Central
۰.۰ (بدون امتیاز)
امتیاز دهید
فهرست مطالب

چکیده
پيشينه
نتايج و بحث
ترانسفورماسيون گياهان آرابيدوپسيس و انتخاب BASTA
مثال هاي ديگر ترانسفورماسيون موفق
نتيجه گيري
روش ها
اختياري
آناليز ژل بلات DNA

نمونه چکیده ترجمه متن فارسی

چکیده
پيشينه: مكش آگروباكتريوم (Agrobacterium vacuum) (بچتولد و همكاران 1993) و غوطه وري گل آذين (floral-dip)(كلوف و بنت1998) روش هايي موثر براي توليد گياهان آرابيدوپسيس ترانسژن هستند. اين روش ها ترانسفورماسيون گياه را بدون نياز به كشت بافت امكان پذير مي سازند. حجم هاي بالايي از كشت هاي باكتريايي در محيط مايع رشد داده مي شوند كه براي هر دوي اين روش هاي ترانسفورم موردنياز هستند. اين امر، ميزان ترانسفورماسيون ها كه مي تواند در زمان مورد نظر انجام شود را به سبب نياز به شيكرهاي گران قيمت و فضاي محدود موجود در روي آن ها، كاهش مي دهد. مضافا، كلوني هاي باكتريايي حاصل از بستر جامد مورد نياز براي شروع اين كشت هاي مايع اغلب در جهت رشد در چنين حجم هاي بزرگي با شكست مواجه مي شود. بنابراين مرحله مناسب مواد گياهي براي ترانسفورماسيون اغلب از دست رفته و مواد گياهي جديد به منظور پرورش مورد نياز است.
نتايج: ما به منظور اجتناب از مشكلات مربوط به كشت هاي مايع باكتريايي در حجم زياد، بررسي كرديم كه آيا باكتري هاي تكثير شده در پليت ها براي ترانسفورماسيون گياه نيز مناسب است. ما در اينجا اثبات كرديم كه باكتري هاي تكثير شده روي پليت ها مي تواند با كارايي مشابهي براي ترانسفورماسيون گياهان حتي بعد از يك هفته ذخيره در 4 درجه سانتي گراد مورد استفاده قرار گيرد و اين موضوع هماهنگي آگروباكتريوم و گياهان براي ترانسفورماسيون را آسان تر مي كند. آناليز ژل بلات DNA بر روي گياهان زنده T1 در انتخاب علف كش انجام شد و ثابت شد كه گياهان باقي مانده ترانس ژن هستند.
نتيجه گيري: روش تسهيل شده با بازدهي مشابه روش هاي گزارش شده قبلي عمل مي كند و بطور معني داري حجم كار، هزينه و زمان را كاهش مي دهد. بعلاوه اين پروتوكل، خطر آلودگي هاي وسيع موجود در GMOها را كاهش مي دهد. ترانسفورماسيون هاي مستقل بسيار زيادي هر روز با استفاده از اين روش اصلاح شده انجام مي شود.

نمونه چکیده متن اصلی انگلیسی

Abstract

Background: The Agrobacterium vacuum (Bechtold et al 1993) and floral-dip (Clough and Bent 1998) are very efficient methods for generating transgenic Arabidopsis plants. These methods allow plant transformation without the need for tissue culture. Large volumes of bacterial cultures grown in liquid media are necessary for both of these transformation methods. This limits the number of transformations that can be done at a given time due to the need for expensive large shakers and limited space on them. Additionally, the bacterial colonies derived from solid media necessary for starting these liquid cultures often fail to grow in such large volumes. Therefore the optimum stage of plant material for transformation is often missed and new plant material needs to be grown.

Results: To avoid problems associated with large bacterial liquid cultures, we investigated whether bacteria grown on plates are also suitable for plant transformation. We demonstrate here that bacteria grown on plates can be used with similar efficiency for transforming plants even after one week of storage at 4°C. This makes it much easier to synchronize Agrobacterium and plants for transformation. DNA gel blot analysis was carried out on the T1 plants surviving the herbicide selection and demonstrated that the surviving plants are indeed transgenic. Conclusion: The simplified method works as efficiently as the previously reported protocols and significantly reduces the workload, cost and time. Additionally, the protocol reduces the risk of large scale contaminations involving GMOs. Most importantly, many more independent transformations per day can be performed using this modified protocol.


بدون دیدگاه