ترجمه مقاله نقش ضروری ارتباطات 6G با چشم انداز صنعت 4.0
- مبلغ: ۸۶,۰۰۰ تومان
ترجمه مقاله پایداری توسعه شهری، تعدیل ساختار صنعتی و کارایی کاربری زمین
- مبلغ: ۹۱,۰۰۰ تومان
Introduction
A large portion of the eukaryotic genome is transcribed as non-coding RNAs (ncRNAs) of various sizes ranging from B20 nucleotides to B100 kb (reviewed in Mercer et al, 2009; Wilusz et al, 2009). Despite the increasing number of long ncRNAs (lncRNAs), very few have thus far been assigned a specific function (for review, see Mercer et al, 2009). Whether some of these ncRNAs represent transcriptional noise or are involved in important cellular functions remains a matter of debate (Mattick and Makunin, 2006). However, several observations support the assertion that lncRNAs are likely to have functions in cells (Chamberlain and Brannan, 2001; Willingham et al, 2005; Feng et al, 2006; Mancini-Dinardo et al, 2006; Martianov et al, 2007; Rinn et al, 2007; Yang and Kuroda, 2007; Hirota et al, 2008; Mariner et al, 2008; Nagano et al, 2008; Wang et al, 2008; Yu et al, 2008; Chen and Carmichael, 2009; Clemson et al, 2009; Khalil et al, 2009; Mallik and Lakhotia, 2009; Sasaki et al, 2009; Sunwoo et al, 2009).
Synaptic density analysis
The modification of Malat1 ncRNA level in transfected neuronal cultured cells was first examined by ISH (Supplementary Figure 7). Analysis of synapsin I puncta density was then performed on the same neurons. Punctae of synapsin immunoreactivity were counted along three primary dendrites for each neuron using Metamorph Software. We chose synapsin I immunoreactivity as this accurately correlates with synapse formation (Fletcher et al, 1991; Zhang and Benson, 2001; Graf et al, 2004). Three independent cultures were examined and 10 neurons per condition and per culture were counted. Analyses were performed blind. Two-way ANOVA was used for statistical analysis.
اخیراً تعداد فزایندهای RNA های بلند غیر کد کنندهی حفظ شده هستهای (ncRNA) گزارش شدهاند. به هر حال، عملکردهای کمی برای این ncRNA ها شرح داد شده است. در اینجا، ما عملکرد یکی از این ncRNA ها، که به عنوان تراسکریپتاز 1 مربوط به متاستاز سرطان ریه (malat 1) شناخته میشود، را مشخص کردهایم. Malat1 RNA در بافتهای متعددی بیان میشود و در سلولهای عصبی بسیار فراوان است. تنها هنگامی که رونویسی وابسته به RNA پلیمراز II فعال است، Malat1 RNA در speckle هستهای غنی شده است. مطالعات ناک داون نشان دادهاند که malat1 به کار گیری فاکتورهای پیرایش pre-mRNA خانوادهی SR را جایگاه رونویسی ارائهی انتقال ژن تغییر میدهد. آنالیزهای ریزآرایهی DNA در سلولهای نوروبلاستوما تخلیه شده- malat1 نشان میدهد malat1 بیان ژنهایی که نه تنها در پردازشهای هستهای بلکه همچنین در عملکرد سیناپس نیز دخیل هستند را کنترل میکند. در نورونهای کشت شدهی هیپوکامپ، ناک داون malat1 تراکم سیناپسی را افزایش میدهد، در حالی که بیان بیش از حد آن منجر به افزایش خود به خودی سلول درتراکم سیناپسی میشود. نتایج ما پیشنهاد میکند که malat1 شکل گیری سیناپس از طریق تعدیل در بیان ژنهای دخیل در شکل گیری سیناپس و/یا حفظ را تنظیم میکند.
مقدمه
بخش بزرگی از ژنوم یوکاریوتی به عنوان RNA های غیر کد شونده در اندازههای متنوع در محدودهی ~ ۲۰ نوکلئوتید تا ~ ۱۰۰ کیلوباز، (بررسی شده در مرسر و همکاران، 2009؛ ویلوز و همکاران، 2009).) توصیف شدهاند. بر خلاف تعداد رو به افزایش ncRNA های طویل (lncRNA)، به تعداد بسیار کمی تا کنون عملکرد خاص اختصاص داده شده است (برای بررسی، مرسر و همکاران ۲۰۰۹ را ببینید). خواه تعدادی از این ncRNA ها اختلال رونویسی را نشان بدهند یا در عملکردهای مهم سلولی درگیر باشند، موضوع بحث باقی میمانند (ماتیک و ماکونین ۲۰۰۶). به هر حال، مشاهداتی از این ادعا که ncRNA ها به احتمال زیاد عملکردهایی در سلول دارند را حمایت میکند (چامبرلین و برانان ۲۰۰۱؛ ویلینگهام و همکاران ۲۰۰۵؛ فنگ و همکاران ۲۰۰۶؛ مانسینی- دیناردو و همکاران ۲۰۰۶؛ مارتیانوف و همکاران ۲۰۰۷؛ رین و همکاران ۲۰۰۷؛ ینگ و کورودا ۲۰۰۷؛ هیروتا و همکاران ۲۰۰۸؛ مارینر وهمکاران ۲۰۰۸؛ ناگانو و همکاران ۲۰۰۸؛ ونگ و همکاران ۲۰۰۸؛ یو و همکاران ۲۰۰۸؛ چن و کارمیچل ۲۰۰۹؛ کلمسون و همکاران ۲۰۰۹؛ خلیل و همکاران ۲۰۰۹؛ مالیک و لاخوتیا ۲۰۰۹؛ ساساکی و همکاران ۲۰۰۹؛ سانوو و همکاران ۲۰۰۹).
انالیز تراکم سیناپسی
تغییرات سطح Malat1 ncRNA در سلولهای کشت شدهی نورونی تراسفکت شده در ابتدا با ISH بررسی شد (شکل الحاقی ۷). سپس انالیز تراکم نقاط سیناپسین ۱ بر روی همان نورونها انجام شد. نقاط ایمونوراکتیویتی سیناپسین در طول سه دندریت اولیه برای هر نورون با استفاده از نرم افزار متامورف شمارش شد. ما ایمونوراکتیویتی سیناپسین ۱ را از این ارتباط دقیق با شکل گیری سیناپس انتخاب کردیم (فلچر و همکاران ۱۹۹۱؛ ژانگ و بنسون ۲۰۰۱: گرف و همکاران ۲۰۰۴). سه کشت مختلف بررسی شد و ۱۰ نورون به ازای هر کشت شمارش شد. انالیزها به صورت کور انجام شد. دو راهی ANOVA برای انالیزهای اماری استفاده شد.